跳轉至內容
Merck
首頁聚合酶鏈式反應應用標準 PCR 操作流程

標準 PCR 操作流程

如何進行 PCR

標準的聚合酶鏈式反應(PCR)實驗流程包含四個步驟:

  1. 將所需試劑或預混液與模板加入 PCR 管中。
  2. 混合並離心。
    *若使用無加熱蓋的熱循環儀,請加入礦物油以防止蒸發。
  3. 根據熱循環儀及引物的參數進行擴增。
  4. 透過瓊脂糖凝膠電泳,並經溴化乙錠染色,評估擴增後的 DNA。
將 PCR 試管放入熱循環儀中,以進行 PCR 的擴增步驟。

以下將更詳細地說明這些步驟,並提供材料與試劑選擇的建議。這是一套使用 Taq DNA 聚合酶的基本 PCR 操作流程。

PCR 步驟與必備組件

PCR 反應的故障排除涉及許多因素。觀看這段動畫,了解如何根據您的需求選擇合適的組件與循環條件,以幫助您獲得最佳結果。


如需其他聚合酶或進階 PCR 技術的相關操作流程,請參閱我們的《PCR 技術指南》中的「操作流程」章節。

請參閱我們的「PCR 基礎知識」頁面,進一步了解標準 PCR,包括其定義等相關內容。

試劑:進行 PCR 需要哪些材料?

什麼是 Taq 聚合酶?

Taq DNA 聚合酶是一種源自嗜熱細菌 Thermus aquaticus 的耐熱酶,常被用於 PCR 中的 DNA 片段擴增。此酶為重組形式,由大腸桿菌(E. coli)表達。它能夠承受反覆加熱至 95 °C(此為 PCR 技術所需),且不會造成顯著的活性損失。 經 SDS-PAGE 分析,該酶的分子量約為 94 kDa,且未檢測到內切酶或外切酶活性。它具有 5'→3' DNA 聚合酶活性及 5'→3' 外切酶活性。 每批 Taq DNA 聚合酶均經過 PCR 擴增及雙鏈定序測試。該酶以 5 單位/µL 的濃度供應,並附有經優化的 10x 反應緩衝液。

標準 Taq DNA 聚合酶

請參閱下表,根據您的反應條件選擇合適的 Taq DNA 聚合酶混合配方。可從透明或紅色染色配方中選擇,這些配方有含氯化鎂(MgCl₂)與不含氯化鎂的版本,亦可選擇已預先調配的預混液或主混合液,其中已包含緩衝液和 dNTP。

單位定義:一個單位指在 74 °C 下,30 分鐘內將總計 10 nmol 的脫氧核苷三磷酸整合至可酸沉澱的 DNA 中。

操作步驟:PCR 步驟

Taq DNA 聚合酶、模板 DNA、引物及 MgCl₂ 的濃度最佳條件,將取決於所使用的系統。可能需要針對每個單一組分分別確定最佳條件。這點對於 Taq DNA 聚合酶、循環參數及 MgCl₂ 濃度而言尤為重要。建議透過滴定法調整酶和 MgCl₂ 的濃度,以確定最佳效率。

  1. 請依照表格所列順序,將試劑加入適當尺寸的試管中。(請根據反應設置選擇適當的表格:標準試劑或預混試劑。)若需進行大量反應,應先配製不含模板的主混合液,並分裝至反應管中。最後,再將模板加入相應的試管中。

標準 PCR 反應

*同時購買緩衝液與 Taq 聚合酶:D1806、D4309 或 D4545

即用型 PCR 反應混合液

2. 使用渦旋混合器輕柔混合,並進行短暫離心,使所有成分沉澱至試管底部。

注意:若使用無加熱蓋的熱循環儀,請在每個試管頂部加入 50 µL 礦物油,以防止蒸發。

3. 進行擴增。擴增參數會因所使用的引物及熱循環儀而異。可能需要針對個別引物、模板及熱循環儀來優化系統。

典型循環參數

建議進行 25-30 個擴增循環。

4. 可透過瓊脂糖凝膠電泳及隨後的溴化乙醯苯染色,對擴增後的 DNA 進行檢測。

      註:可透過單次氯仿萃取(1:1)去除礦物油上層,並回收水相。

核酸電泳試劑

  • 瓊脂糖(預製凝膠、粉末等)
  • 緩衝液,例如 MOPS-EDTA-乙酸鈉、Tris-乙酸-EDTA (TAE) 或 Tris-硼酸-EDTA (TBE)
  • RNA用凝膠加樣溶液及樣本加樣緩衝液
  • 電泳染色劑或染料,例如溴化乙錳
1.
Cheng S, Fockler C, Barnes WM, Higuchi R. 1994. Effective amplification of long targets from cloned inserts and human genomic DNA.. Proceedings of the National Academy of Sciences. 91(12):5695-5699. https://doi.org/10.1073/pnas.91.12.5695
2.
Chou Q. 1992. Minimizing deletion mutagenesis artifact duringTaqDNA polymerase PCR byE.coliSSB. Nucl Acids Res. 20(16):4371-4371. https://doi.org/10.1093/nar/20.16.4371
3.
Innis MA. 1995. PCR Strategies. New York: Academic Press.
4.
Innis MA. 1990. PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications. New York: Academic Press.
5.
Innis MA, Myambo KB, Gelfand DH, Brow MA. 1988. DNA sequencing with Thermus aquaticus DNA polymerase and direct sequencing of polymerase chain reaction-amplified DNA.. Proceedings of the National Academy of Sciences. 85(24):9436-9440. https://doi.org/10.1073/pnas.85.24.9436
6.
Newton CR. 1995. PCR: Essential Data. 1. Wiley-Blackwell.
7.
Olive DM, Simsek M, Al-Mufti S. 1989. Polymerase chain reaction assay for detection of human cytomegalovirus.. 27(6):1238-1242. https://doi.org/10.1128/jcm.27.6.1238-1242.1989
8.
Pääbo S, Gifford JA, Wilson AC. 1988. Mitochondrial DNA sequences from a 7000-year old brain. Nucl Acids Res. 16(20):9775-9787. https://doi.org/10.1093/nar/16.20.9775
9.
Erlich HA. 1989. PCR technology : principles and applications for DNA amplification. New York: Stockton Press.
10.
Sambrook J, Fritsch E, Maniatis T. 1989. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press.
11.
Sarkar G, Kapelner S, Sommer SS. 1990. Formamide can dramatically improve the specificity of PCR. Nucl Acids Res. 18(24):7465-7465. https://doi.org/10.1093/nar/18.24.7465
12.
Winship PR. 1989. An lmproved method for directly sequencing PCR-amplified material using dimethyl sulphoxide. Nucl Acids Res. 17(3):1266-1266. https://doi.org/10.1093/nar/17.3.1266

標籤授權聲明

致購買者之通知:授權免責聲明

購買本產品並不授予任何依據美國專利號 5,804,375、5,994,056、6,171,785、6,214,979、5,538,848、 5,723,591、5,876,930、6,030,787 及 6,258,569,以及美國境外的對應專利,或任何其他與 5’ 核酸酶及雙鏈 DNA 結合染料製程相關的專利或專利申請,均不授予任何許可。 如需進一步資訊,請聯絡 Applied Biosystems 授權總監,地址:850 Lincoln Centre Drive, Foster City, California 94404, USA

材料

Loading