標準 PCR 操作流程
如何進行 PCR
標準的聚合酶鏈式反應(PCR)實驗流程包含四個步驟:
- 將所需試劑或預混液與模板加入 PCR 管中。
- 混合並離心。
*若使用無加熱蓋的熱循環儀,請加入礦物油以防止蒸發。 - 根據熱循環儀及引物的參數進行擴增。
- 透過瓊脂糖凝膠電泳,並經溴化乙錠染色,評估擴增後的 DNA。

以下將更詳細地說明這些步驟,並提供材料與試劑選擇的建議。這是一套使用 Taq DNA 聚合酶的基本 PCR 操作流程。
PCR 步驟與必備組件
PCR 反應的故障排除涉及許多因素。觀看這段動畫,了解如何根據您的需求選擇合適的組件與循環條件,以幫助您獲得最佳結果。
什麼是 Taq 聚合酶?
Taq DNA 聚合酶是一種源自嗜熱細菌 Thermus aquaticus 的耐熱酶,常被用於 PCR 中的 DNA 片段擴增。此酶為重組形式,由大腸桿菌(E. coli)表達。它能夠承受反覆加熱至 95 °C(此為 PCR 技術所需),且不會造成顯著的活性損失。 經 SDS-PAGE 分析,該酶的分子量約為 94 kDa,且未檢測到內切酶或外切酶活性。它具有 5'→3' DNA 聚合酶活性及 5'→3' 外切酶活性。 每批 Taq DNA 聚合酶均經過 PCR 擴增及雙鏈定序測試。該酶以 5 單位/µL 的濃度供應,並附有經優化的 10x 反應緩衝液。
標準 Taq DNA 聚合酶
請參閱下表,根據您的反應條件選擇合適的 Taq DNA 聚合酶混合配方。可從透明或紅色染色配方中選擇,這些配方有含氯化鎂(MgCl₂)與不含氯化鎂的版本,亦可選擇已預先調配的預混液或主混合液,其中已包含緩衝液和 dNTP。
單位定義:一個單位指在 74 °C 下,30 分鐘內將總計 10 nmol 的脫氧核苷三磷酸整合至可酸沉澱的 DNA 中。
操作步驟:PCR 步驟
Taq DNA 聚合酶、模板 DNA、引物及 MgCl₂ 的濃度最佳條件,將取決於所使用的系統。可能需要針對每個單一組分分別確定最佳條件。這點對於 Taq DNA 聚合酶、循環參數及 MgCl₂ 濃度而言尤為重要。建議透過滴定法調整酶和 MgCl₂ 的濃度,以確定最佳效率。
- 請依照表格所列順序,將試劑加入適當尺寸的試管中。(請根據反應設置選擇適當的表格:標準試劑或預混試劑。)若需進行大量反應,應先配製不含模板的主混合液,並分裝至反應管中。最後,再將模板加入相應的試管中。
標準 PCR 反應
*同時購買緩衝液與 Taq 聚合酶:D1806、D4309 或 D4545
即用型 PCR 反應混合液
2. 使用渦旋混合器輕柔混合,並進行短暫離心,使所有成分沉澱至試管底部。
注意:若使用無加熱蓋的熱循環儀,請在每個試管頂部加入 50 µL 礦物油,以防止蒸發。
3. 進行擴增。擴增參數會因所使用的引物及熱循環儀而異。可能需要針對個別引物、模板及熱循環儀來優化系統。
典型循環參數
建議進行 25-30 個擴增循環。
4. 可透過瓊脂糖凝膠電泳及隨後的溴化乙醯苯染色,對擴增後的 DNA 進行檢測。
註:可透過單次氯仿萃取(1:1)去除礦物油上層,並回收水相。
核酸電泳試劑
- 瓊脂糖(預製凝膠、粉末等)
- 緩衝液,例如 MOPS-EDTA-乙酸鈉、Tris-乙酸-EDTA (TAE) 或 Tris-硼酸-EDTA (TBE)
- RNA用凝膠加樣溶液及樣本加樣緩衝液
- 電泳染色劑或染料,例如溴化乙錳
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